1．培育细胞：取处于指数生长期、用较大瓶皿培育的、80％～90％汇合单层培育细胞。 
2．加秋水仙素：运用浓度为0.02～0.8微克/毫升营养液，温箱持续培育6～10小时；或用低温关闭法：把培育细胞置于4℃条件下6～12小时后，再于37℃温箱持续培育6～10小时处理（加秋水仙素）。 
3．收集分裂细胞：可利用分裂中期细胞体变圆与底物附着不牢特点，此时手持培育瓶，左右重复横向水平摇动，令培育液在培育细胞外表重复冲刷。应用此法可使90％的中期分裂细胞从瓶壁脱落，留意勿用力过猛，以防多量非分裂细胞脱落影响调查。 
4．离心：收集培育液，1000转/分钟离心5～10分钟。 
5．低渗处理：吸除上清液、加入预温至37℃的0.075M KCl溶液，在温箱中静置20～30分钟。 
6．预固定：向悬液中加新鲜1：3醋酸、甲醇固定液1ml，用吸管吹打调匀，此措施能起到先使细胞外表轻微固定，可防止固定后细胞粘连成块。 
7．固定：离心，同4，吸除上清液，加新鲜固定剂5～10ml；加固定剂时要用一手微斜持离心管，另手用吸管吸取固定剂，把固定剂逐滴滴在离心管壁上，使之渐渐流入离心管中，然后轻轻吹打均匀，置15～20分钟。 
8．重复7，末次离心后，小心吸除大部分上清，据悬液中细胞密度大小，余下固定液0.5～1ml。 
9．制片：用滴片法制片，按如下步骤：彻底洗净载物片，勿留任何油脂，置冰箱中储藏备用。滴片前现从冰箱中取出冷载物片1片，在载物片外表出现细微水气时，当即向片的一侧滴2～3滴细胞悬液，滴片时的距离能保持半米高度才好。滴片后置室温中令其自然干燥，或用吹风机热风吹干亦可。如此制备好的标本可置盒中备用或当即进行染色调查。 
10． 染色和封片：一般常用Giemsa染色：取干液Giemsa 1份加pH6.8磷酸缓冲液9份混合，染色10分钟后，水洗、晒干、可直接调查。如标本需求保存或做长期调查，可过二甲苯两次后，用中性树胶封片后，再过二甲苯，然后封片亦可。